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蛋白原核表達-從原理到實操超詳細教程【蛋白表達】

2025-09-05 10:39:38

來源/作者:普拉特澤-生物醫(yī)學整體課題外包平臺

    寶子們,做生物實驗的一定對蛋白原核表達不陌生!今天噗啦噗啦實驗室就來給大家奉上一份超全攻略,從核心原理到操作步驟,手把手帶你玩轉蛋白原核表達

一、原核表達核心原理

1.技術本質

通過基因工程手段,將目標基因插入表達載體后導入原核宿主細胞(如大腸桿菌),利用細胞內的轉錄和翻譯機制,實現外源蛋白質的高效合成。這一技術通過重組表達系統的構建,為蛋白質的生產、結構解析和功能研究提供了關鍵工具。

2.應用場景

①蛋白質表達技術在生物醫(yī)學領域應用廣泛:

②純化制備:獲取高純度蛋白質,用于生物化學分析或結構生物學研究;

③亞細胞定位:揭示蛋白質在細胞內的分布規(guī)律,解析其功能機制;

④結構域分析:通過分段表達不同蛋白片段,研究結構與功能的對應關系;

⑤功能驗證:為體外模擬蛋白質在生理或病理過程中的作用提供實驗材料,助力疾病診療研究。

3.系統分類

→蛋白質表達系統主要分為原核與真核兩大類,其中原核系統包括:

→大腸桿菌表達系統:最常用的原核平臺,具有遺傳背景清晰、表達效率高、培養(yǎng)周期短(僅需幾小時)、抗污染能力強、技術成熟且成本低廉等優(yōu)勢,適用于大多數重組蛋白的表達;

→芽孢桿菌表達系統:分泌能力強,產物易于純化,適合需要分泌表達的蛋白質;

→鏈霉菌表達系統:常用于抗生素相關酶的生產,利用其天然代謝特性合成特定功能蛋

4.大腸桿菌系統優(yōu)勢

大腸桿菌作為原核表達的首選宿主,具備以下核心優(yōu)勢:

基因組信息研究透徹,便于基因工程操作;

短時間內可大量合成目標蛋白,滿足實驗與生產需求;

培養(yǎng)條件簡單(如 LB 培養(yǎng)基),適合大規(guī)模放大培養(yǎng);

實驗技術標準化程度高,操作流程成熟易掌握;

菌株和質粒資源豐富,可根據蛋白特性靈活選擇表達載體。

二、原核表達標準化操作流程

1.轉化

將構建好的重組表達載體轉入感受態(tài) BL21/DE3菌株,常用熱激法(42°C短暫處理)或電轉化法,優(yōu)化操作以確保高效轉化,篩選出含有目標基因的陽性克隆。

2.擴大培養(yǎng)

在 500ml 滅菌 LB 培養(yǎng)基中加入對應抗性抗生素(終濃度 50-100ug/ml),挑取單菌落接種后于 37°C搖床培養(yǎng)至菌液濃度達到誘導標準(通

常 OD<sub>600</sub>為 0.6-0.8)

3.誘導過夜

取 100m 誘導前菌液(標記為 Pre-l)保存作為表達基線對照

剩余菌液中加入IPTG(終濃度 0.1-0.5mM),18°C過夜誘導,促使目標基因表達。

4.菌體收集

誘導后的菌液經 4000rpm 離心 25 分鐘,棄上清后,用 30-35mI Ni-A 緩沖液(適用于 His 標簽蛋白)重懸菌體,轉移至離心管備用。

5.超聲裂解

冰浴條件下,用超聲波破碎儀裂解菌體(功率200W,工作周期3秒開/3秒停,總時長9分鐘,分3次操作),隨后通過 Bradford 法檢測裂解液中的總蛋白濃度,驗證裂解效果

6.離心分層

裂解液于 4°℃、4000rpm 離心 25 分鐘,分離出上清液(SUP,含可溶性蛋白)和沉淀(PPT含包涵體或細胞碎片),分別保留用于后續(xù)分析。

7.鎳柱純化

▲平衡:先用高濃度咪唑的 Ni-B 緩沖液(如400mM)沖洗鎳柱去除雜質,再用低濃度咪唑的 Ni-A 緩沖液(如 20mM)平衡柱子;結合:將上清液與鎳柱填料混合,4°C孵育1-1.5 小時,使 His 標簽蛋白與鎳離子充分結合;

▲洗雜與洗脫

過柱后收集穿流液(UB),檢測未結合的雜蛋白,評估結合效率;

用 Ni-A 緩沖液洗去雜蛋白(收集 WS樣本),再用 Ni-B緩沖液洗脫目的蛋白(收集E樣本),通過 Bradford 試劑監(jiān)測至無雜蛋白釋放。

8.變性與電泳將目的蛋白樣本(E)、Pre-1、SUP、PPT.UB、WS 等分別加入 Loading Buffer,95°C變性 10 分鐘,使蛋白完全解鏈,隨后進行 SDS-PAGE 電泳(200V,40分鐘),分離不同分子量的蛋白條帶

9.染色分析

電泳結束后,用考馬斯亮藍染色液對凝膠染色通過微波爐輔助脫色(加熱后搖床洗脫),直至清晰顯示蛋白條帶,對比 Marker 判斷目標蛋白的分子量和表達量。

三、關鍵樣本類型與作用

在原核表達實驗中,需收集多種樣本以評估各環(huán)節(jié)效果:

Pre-l(誘導前菌液):誘導劑加入前的菌體樣本,用于對比誘導前后的蛋白表達基線判斷誘導是否有效;

Induced(誘導后菌液):加入IPTG后的菌體樣本,驗證外源蛋白是否成功表達及表達水平;

SUP(上清液):離心后的可溶性蛋白樣本,反映目標蛋白是否以可溶形式存在于細胞中;

PPT(沉淀):離心后的包涵體或細胞碎片樣本,提示目標蛋白是否形成不可溶的包涵體,需進一步復性處理;

UB(穿流液):鎳柱純化中未結合的液體,用于檢測目標蛋白與鎳柱的結合效率及雜蛋白殘留量;

WS(洗雜液):洗去雜蛋白的流出液,監(jiān)測純化柱是否干凈,雜蛋白去除是否徹底

E(洗脫液):最終收集的目的蛋白樣本,用于驗證純化后的蛋白純度和得率。

寶子們,蛋日原核表達雖然復雜,但掌握了這些要點實驗就能順利很多巴!快收藏起來,實驗的時候拿出來參考~要是還有問題,隨時交流呀:18570028002(微信同號)


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