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PCR檢測支原體操作步驟由普拉特澤生物為大家總結(jié)分享，PCR檢測是支原體檢測中最常用的實驗方法，其他分別是化學發(fā)光法、DNA染色法、支原體培養(yǎng)法等。普拉特澤生物表達檢測平臺長期為廣大基礎(chǔ)科研人員提供支原體檢測外包服務，歡迎咨詢。

支原體因為個頭小，能穿過0.22 μm濾器，并且在實驗室內(nèi)會潛在的擴散。支原體污染細胞后，培養(yǎng)液不一定會發(fā)生混濁。多數(shù)情況下細胞病理變化輕微或不顯著，細微變化也可由于傳代、換液而緩解，因此易被忽視。但個別嚴重者，可致細胞增殖緩慢，甚至從培養(yǎng)器皿脫落。所以支原體感染會使培養(yǎng)的細胞慢慢枯萎，使得用被污染的細胞樣本做的實驗完全失去
意義和價值。因此，有必要對新引進的細胞和實驗過程中的細胞株進行支原體檢測。

PCR法檢測的實驗原理是：原核生物的rRNA堿基序列非常保守，而rRNA操縱子上編碼rRNA的DNA間隔區(qū)如16S和23S間隔區(qū)，各種生物種間的堿基序列差別很大。這個間隔區(qū)的DNA 序列及長度在Mycoplasma 各個種間既有相對保守的部分，也有具有很大差異的部分。本制品是在編碼16S 和23S rRNA的DNA 上設(shè)計一對F1/R1 引物，擴增編碼16 S 和23S rRNA 的DNA 間隔區(qū)。此反應體系只特異性擴增 Mycoplasma DNA，檢出靈敏度與特異性都很高。

PCR法檢測支原體操作步驟

如下：

1、支原體樣品預處理

收集200 ul樣品于PCR管中，12000rpm離心5分鐘，去除上清液，加入30 ul純水或者PBS重懸，然后將其置于95℃加熱10分鐘，冷卻到12℃，最后8000rpm離心2分鐘，上清液為樣品備用。

2、支原引物檢測

3、PCR檢測

（1）將合成的引物稀釋成終濃度為100 nmol/L的儲藏液與10 nmol/L的工作液。

（2）配制PCR預混液。

（3）向以上反應混合液中加入檢測樣品（5ul以下），使總體積達到50ul。添加樣本時應防止交叉污染。

（4）把反應管放入PCR儀中，設(shè)定以下條件，進行PCR反應。PCR的檢測下限是M. capricolum 1ng， M. hyopneumoniae和U. urealyticum 100pg、其他的Mycoplasma是10pg。但是Human DNA、Mouse DNA在100 ng時有非特異性片段擴增。

（5）預先配置好1~1.5%的瓊脂糖膠，將完成的PCR反應液依次加入到膠孔中并選擇合適的Marker進行瓊脂糖凝膠電泳。

4、實驗注意事項

（1） PCR反應的前期操作應在無菌環(huán)境中進行。

（2）檢測前，待測細胞要用無雙抗培養(yǎng)基培養(yǎng)7d。

PCR法檢測支原體因為操作簡單、準確率高成為大家檢測支原體最常用的方法，那PCR檢測支原體的步驟和注意事項就給大家介紹到這里啦，如果您還有什么其他的技術(shù)問題或支原體檢測外包的需求歡迎直接留言給客服，技術(shù)會第一時間回復您的哦~

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